Carl Zeiss Axio Imager 2: моторизованная платформа для исследовательской микроскопии

Биржа забирает 35%. Copyero — публикации напрямую без посредников.

Лабораторный световой микроскоп Zeiss на рабочем столе

Исследовательский микроскоп отличается от рутинного не столько качеством оптики, сколько степенью управляемости. Когда эксперимент требует повторить съёмку через сутки в тех же условиях, свести несколько каналов флуоресценции или собрать серию изображений по глубине, ручных регулировок становится мало — нужна платформа, где параметры фиксируются и воспроизводятся программно. Carl Zeiss Axio Imager 2 создавался именно как такая платформа.

Разберём архитектуру семейства, его оптическую систему, возможности автоматизации и типовые области применения. Материал ознакомительный: конфигурация исследовательской системы всегда собирается под конкретную методику, и обсуждать её лучше с профильным инженером.

Семейство, а не одна модель

Axio Imager 2 — это линейка прямых микроскопов с общей оптической базой, различающихся уровнем автоматизации. Разница между исполнениями определяет не столько предельное качество изображения, сколько то, насколько система способна работать без постоянного вмешательства оператора.

  • полностью ручные варианты — все переключения выполняются вручную, конфигурация фиксируется оператором;
  • кодированные исполнения — прибор «знает» положение револьвера, фильтров и других узлов и передаёт эти данные в программу;
  • моторизованные версии — управление объективами, фильтрами, диафрагмами и фокусом с компьютера;
  • полностью автоматизированные конфигурации — включая моторизованный столик, автофокус и сложные многомерные протоколы съёмки.

Кодирование узлов часто недооценивают, а именно оно решает проблему воспроизводимости: метаданные снимка содержат реальные параметры съёмки, и через полгода не приходится гадать, каким объективом и с каким фильтром был получен кадр.

Оптическая система и объективы

Микроскоп использует оптику с бесконечной коррекцией, где исправление аберраций распределено между объективом и тубусной линзой. Такой подход позволяет вводить в параллельный участок хода лучей дополнительные элементы — призмы ДИК, флуоресцентные кубики, модули оптического секционирования — без потери качества изображения.

Линейка объективов охватывает несколько уровней коррекции:

  • ахроматы и планахроматы для обзорной работы и рутинных задач;
  • полуапохроматы с высокой светосилой — рабочий выбор для флуоресценции;
  • апохроматы с максимальной коррекцией — для количественной микроскопии и многоканальной съёмки, где важно точное совмещение каналов;
  • специализированные объективы: с коррекционным кольцом, для работы с иммерсией разных типов, для поляризации.

Для многоканальных экспериментов степень хроматической коррекции критична напрямую: если каналы фокусируются на разной глубине, наложение изображений даёт ложную картину колокализации сигналов.

Флуоресценция и светодиодное возбуждение

Флуоресцентный тракт — одна из сильных сторон платформы. Ртутные лампы в современных конфигурациях почти вытеснены светодиодными осветителями, и переход дал сразу несколько практических выигрышей.

  • мгновенное включение и выключение без прогрева и остывания;
  • переключение длин волн за миллисекунды, что позволяет снимать каналы быстро и последовательно;
  • образец освещается только во время экспозиции — меньше выцветания красителя и фототоксичности;
  • стабильная интенсивность на всём сроке службы, а значит сопоставимость измерений между сериями;
  • отсутствие ртути и связанных с ней требований к утилизации.

Ещё одна важная возможность — методы оптического секционирования на базе структурированного освещения. Они позволяют убрать из кадра засветку от слоёв, лежащих вне фокуса, и получить чистые оптические срезы на обычном широкопольном микроскопе, без перехода на конфокальную систему.

Исследователь работает за флуоресцентным микроскопом в затемнённой лаборатории

Методы контрастирования

Помимо флуоресценции, платформа поддерживает практически весь арсенал световой микроскопии, и все методы доступны на одном штативе.

  • светлое поле — гистологические и цитологические препараты;
  • фазовый контраст — прозрачные неокрашенные объекты и живые клетки;
  • ДИК — рельефное изображение тонких структур с высоким разрешением;
  • тёмное поле — объекты с сильным рассеянием, наночастицы, микроорганизмы;
  • поляризация — кристаллы, коллаген, минералы, полимерные материалы;
  • отражённый свет — непрозрачные образцы в материаловедении и микроэлектронике.

Автоматизация съёмки и программная часть

Моторизованные исполнения раскрываются в связке с программным обеспечением, которое превращает микроскоп из наблюдательного прибора в инструмент получения данных. Типичные протоколы, недоступные в ручном режиме:

  • Z-стеки — серия изображений по глубине с последующей проекцией или трёхмерной реконструкцией;
  • сшивка полей — автоматический обход препарата моторизованным столиком и склейка обзорной карты;
  • многоканальная съёмка с точным согласованием каналов и автоматическим переключением фильтров;
  • таймлапс с автофокусом, компенсирующим температурный дрейф на длинных экспериментах;
  • сохранение и вызов конфигураций съёмки, что позволяет повторить условия эксперимента спустя месяцы.

Отдельно стоит отметить количественный анализ: измерение интенсивности, подсчёт объектов, морфометрия. Именно на этом этапе кодирование узлов и стабильность светодиодного источника превращаются в измеримое качество результата.

Где применяют платформу

Область использования широка: нейробиология и работа с иммунофлуоресцентно окрашенными срезами мозга, патоморфология и исследовательская гистология, клеточная биология, ботаника и зоология, микробиология, а также материаловедение и микроэлектроника в конфигурациях с отражённым светом и поляризацией. Общее у этих задач — необходимость получать не просто картинку, а данные, пригодные для сравнения и статистической обработки.

Как собирают систему и что делает поставщик

Спецификация исследовательского микроскопа обычно занимает несколько страниц: штатив нужного уровня автоматизации, набор объективов, флуоресцентные фильтры под конкретные красители, осветитель, камера, лицензии на программные модули. Ошибка в подборе фильтров или несогласованность камеры с полем зрения способны обесценить дорогую конфигурацию.

Поэтому такие проекты ведут вместе с поставщиком, работающим с исследовательской микроскопией постоянно. Специалисты компании Microscope One разбирают методику до уровня используемых красителей и требуемых измерений, предлагают согласованную конфигурацию, проверяют совместимость модулей, организуют поставку, монтаж, обучение персонала и последующее сервисное обслуживание. Подробное описание платформы и вариантов исполнения доступно на странице microscope.one, где собраны технические параметры и доступные модули.

Эксплуатация: что влияет на результат

Исследовательская система чувствительнее рутинной к условиям размещения и обслуживанию, и часть проблем с качеством данных объясняется не прибором, а окружением.

  • стабильная температура в помещении — при длительных экспериментах дрейф фокуса вызван именно её колебаниями;
  • виброизоляция: моторизованный столик и длинные экспозиции не прощают вибраций от вентиляции и центрифуг;
  • аккуратное обращение с флуоресцентными фильтрами — их берут только за оправу;
  • иммерсионное масло только рекомендованного типа, с обязательным удалением после работы;
  • периодическая проверка юстировки осветителя и корректности совмещения каналов по калибровочным образцам.

Полезная практика — вести журнал конфигураций и обслуживания системы. В лабораториях, где на одном микроскопе работают несколько групп, это единственный надёжный способ понимать, в каких условиях получены те или иные данные.

Исследователь работает за микроскопом с подключённым компьютером